原滴度是不平行的。适当的振荡可使醛化剂与红血球充分接触，并可排除凝块形成。但过分地振荡，则易产生气泡，引起红血球变形。3．红血球鞣化多糖、脂多糖、类脂等一些半抗原易于吸附红血球表面，所以一般醛化处理即可。但对于许多蛋白质抗原，由于不易吸附于红血球表面，所以在醛化的基础上，必须再以一定浓度的鞣酸进行处理，强化它对蛋白质的吸附能力。有人认为双醛化后可不必进行鞣化。首都医院做了“丙酮醛＋甲醛＋鞣化”和
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f不加鞣化得出相同的抗原滴度。但多数意见认为醛化后仍需鞣化比较好。1鞣化过程：①将10％醛化红血球用生理盐水洗涤2次，再以015MolLpH72PBS洗涤1次，最后以PBS配成250％悬液；②称取优质鞣酸20mg，以生理盐水4ml配成1200的浓度，于37℃水浴，使之充分溶解，然后再以pH72PBS稀释成12000的浓度。当天配制、当天用完；③1份25％红血球悬液与1份12000鞣酸液充分混合，37℃水浴10mi
，1500r／mi
离心，去上清，用PBS液洗涤1次；④以002％牛血清白蛋白PBS液洗涤1次，最后以牛血清白蛋白PBS配成25％鞣化红血球。（2）影响鞣化的因素：①鞣酸的质量：这是很重要的，所以必须采用优质鞣酸。分析纯的鞣酸呈面包屑状，不呈面粉状，有折光性；②鞣酸的浓度：浓度过高，可以出现红血球的凝集现象；浓度过低，达不到红血球的活化作用。醛化过的红血球所采用的鞣酸浓度一般比新鲜红血球高10倍。通常以1：2000为佳；③鞣化时间：鞣化过程一般10mi
～15mi
即可完成。时间再长也不能吸附更多的抗原，提高血凝滴度。鞣化时采用的pH对吸附抗原和血凝滴度影响不大，一般采用pH72的PBS液。（四）红血球的致敏1．致敏抗原剂量的确定一般而言，在一定的范围内，抗原的浓度与试验的敏感性呈正比，超过这个范围，再增加抗原，敏感性不会再提高，而且过大，有时会引起非特异性凝集。当采用一种新的抗原时，必须经过试验，选择适当的抗原致敏浓度，即把抗原稀释成几个不同的浓度分别致敏红血球。再用这些致敏红血球分别与标准阳性血清进行试验，与标准阳性血清呈最高滴度的阳性反应的最小抗原剂量，即为该抗原的单位计量。致敏时，根据不同的抗原，可采用2～4个单位计量进行致敏。2．致敏方法各种抗原的致敏方法大致相同，一般蛋白质的致敏方法如下：所需浓度的抗原1份pH64PBS液4份250％的鞣化红血球悬液1份混匀，置37℃水浴30mi
，离心，沉淀后，以25％兔血清生理盐水洗涤1次，悬浮于1份兔血清生理盐r