小板＜20×109L，明显异常的ECG及其他严重的合并症。副反应随着灌注量及灌注肺段的增加而增加，限制灌洗量到最小需要量，通常限制灌洗总量至100～200ml，可以降低副反应的发生。同时，注意仔细操作，严密监测，对于存在危险因素的患者尤其应该注意监测，使并发症减少到最小程度。
第四节支气管肺泡灌洗液的实验室处理
为了防止因为巨噬细胞的附壁以及细胞活性丧失或死亡，回收的液体必须收集在塑料或硅化的容器内，并尽可能快地送至实验室进行及时处理（室温保存最好不要超过1h）。将所有回收的液体充分混匀（当每次使用20ml进行灌洗时，第一管回收的液体及细胞占总量比例很小，计入总量内，对结果影响不明显），观测性状（如BALF呈混浊奶白色，提示肺泡蛋白沉积症，需进行PAS染色；如BAL液呈橘黄色，提示出血，需进行铁染色），测定液体量，然后经两层纱布过滤，移去黏液，离心1500rmi
×10mi
。上清液保存于－20～－80℃，待做生化成分分析，但是BALF可溶性成分分析的临床意义仍然不清楚。因此，至目前为止也没被推荐常规应用于临床。细胞沉淀用2mlMBE（含BSA和EDTA的MEM）或Ha
k液（不含Ca2、Me2）充分混匀后，等分装在2个Eppe
dorf管内，分别用作细胞分类计数和细胞免疫分析。1细胞总数与活性测定从未经离心的灌洗回收液或经过一次离心沉淀后制成的BALF细胞悬液中取样，通过血细胞计数器（Neubauer细胞计数板）计数BALF细胞数，BALF的细胞总数通常按所有灌洗回收液中的总细胞数1×106表示或按每毫升灌洗回收液中的细胞数1×106ml表示。细胞活性通过台盼蓝（Typa
blue）染色进行评估，新鲜的BALF细胞活性通常在80％～95％之间。如果细胞活性小于50％，细胞形态及功能将明显地受影响。洗涤过程可能导致细胞总数降低，而细胞活性增加。2细胞学分类BALF细胞悬液经过再次离心洗涤后，运用常规细胞涂片技术或细胞离心涂片技术（每张片5×104～20×104细胞）准备BALF细胞涂片至少3张，以备做特殊染色需要。细胞涂片空气干燥后，常规进行Wright或MayGrü
waldGiemsa（MGG）染色后，于光学显微镜下观察，计数至少600个白细胞求分类百分比，以保证良好的重复性。进行细胞分类计数的同时，半定量估计上皮细胞、红细胞等，如果上皮细胞比例大于5％，提示BALF中有支气管成分的混入。除此之外，还要观察细胞形态、巨噬细胞内吞噬体、尘埃颗粒、石棉小体、红细胞片段、CMV包涵体、卡氏肺孢子虫（PCP）、细菌、霉菌、异形上皮及肿瘤细胞。
f如果临床或WrightMGG染色涂片提示有结核、卡氏肺孢子虫r