线。当向pH70的缓冲溶液逐渐加入H2O2时，可以观察到在电位大约为02V处还原峰电流渐渐变大同时伴随着HbFeII氧化峰逐渐消失。通过循环伏安法可以利用HbSWCNTsCTAB膜电极上H2O2的催化还原来检测样品溶液中H2O2的浓度。66×103到454×102M浓度范围内，在可以观察到电催化还原峰电流与H2O2浓度呈线性关系（图8）线性回归方程为IA）。（9305648H2O2mM）（，相关系数为09964。当H2O2的浓度逐渐增大时，校正曲线走势趋于平稳。
375300225
fedcba
IA
15075075040200
0204EVvsAgAgCl
06
08
图7HbSWCNTsCTABGCE在H2O2浓度分别为：（a）0mM，（b）66mM，（c）165mM，（d）262mM，（e）358mM和（f）454mM的pH70的磷酸缓冲溶液中的循环伏安图，扫速为50mVs。
9
f353025
A
I
2015101020301CmmolL4050
图8还原峰电流与H2O2浓度的关系曲线。图9为HbSWCNTsCTABGCE对H2O2催化还原的电流－时间关系曲线，工作电位为03V。由图可知，当每次向搅拌着的底液中加入H2O2以后，HbSWCNTsCTABGCE的电流响应随着的H2O2加入之而增加，并且电极在4秒内达到95％的稳态电流。如此快的电流响应归于SWCNTs在复合膜中的良好的导电作用，它能够降低电子在Hb活性中心与电极之间的移动阻力。观察It曲线的校正曲线（图9内插图）可知，该生物传感器的还原电流与加入的H2O2的浓度呈现正比关系，计算得到线性范围为700×105molL1126×103molL1，（R09983
18），检测限为196×105molL1（信噪比为3）。
10
f250200
12
10
IA
8
IA
150100500
6
0
500
100015001CH2O2molL
2000
2500
200
400600Times
800
1000
图9应用电位为03VvsAgAgCl时，向10mL005molL101M的磷酸缓冲溶液中连续加入20L35mM的H2O2后HbSWCNTsCTABGCE对H2O2催化电流随时间变化的响应曲线，内插图为催化电流响应与H2O2浓度之间的线性关系。35HbSWCNTsCTAB膜电极的稳定性和重现性我们研究了HbSWCNTsCTAB膜电极的稳定性和重现性。在08到03V范围内，持续扫描数圈后膜电极电流保持稳定。当电极放置两周后，峰电流随着储存时间的增长而有所降低，但电极能够保持初始电流响应的88。这可能归因于两方面因素：一是SWCNTs能够在CTAB中稳定存在；二是CTAB可以很好的保持血红蛋白的生物活性。另外，对测定固定浓度的H2O2，制得的膜电极表现出理想的重现性，得到的相对标准偏差为267。4结论本文中，我们通过将血红蛋白和SWCNTsCTAB的分散液涂覆到GCE表面制备了HbSWCNTsCTAB复合膜电极。用不同的方法对膜电极进行了表征。固定在SWCNTsCTABr