4转染：把AB复合物缓缓加入培养液中，摇匀，37℃温箱置624小时，吸除无血清转染液，换入正常培养液继续培养。
5其余处理如观察、筛选、检测等与其它转染法相同。注意：转染时切勿加血清，血清对转染效率有很大影响。
2、快速脂质体转染法操作步骤如下方法二：
1以5×105细胞孔接种6孔板或35mm培养皿培养24小时，使其达到5060板底面积。
2在试管中配制DNA脂质体复合物方法如下：①在1mL无血清DMEM中稀释PSV2
eo质粒DNA或供体DNA。②旋转1秒钟，再加入脂质体悬液，旋转。③室温下放置510分钟，使DNA结合在脂质体上。3弃去细胞中的旧液，用1mL无血清DMEM洗细胞一次后弃去，向每孔中直接加入1mLDNA脂质体复合物，37℃培养35小时。4再于每孔中加入20FCS的DMEM，继续培养1424小时，5吸出DMEMDNA脂质体混合物加入新鲜10FCS的DMEM，2mL孔，再培养2448小时。6用细胞刮或消化法收集细胞，以备分析鉴定。
3、稳定的脂质体转染方法如下：
1接种细胞同前，细胞长至50板底面积可用于转染。2DNA脂质体复合物制备转染细胞同前2、3步骤。3在每孔中加入1mL、20FCS的DMEM，37℃培养48小时。4吸出DMEM，用G418选择培养液稀释细胞，使细胞生长一定时间，筛选转染克隆，方法参照细胞克隆筛选法进行。三、个人经验：1、转染前1天将05～2×105细胞接种于24孔培养板，并加入500ul不含抗生素的完全培养基，以保证转染时细胞汇合达90～95。2、准备复合物1将08ugDNA稀释于50ul无血清无抗生素的培养液中轻轻浑匀。2将2ulLipofectami
e2000稀释于50ul无血清无抗生素的培养液中，轻轻浑匀，室温孵育5分。注意：必须在25分内进行。35分后将它们混合，并轻轻浑匀，室温孵育20分。3、吸去培养板的培养基，用PBS或无血清培养基最好清洗细胞2次。4、将复合物总体积100ul加入培养孔，前后摇动培养板使其分布均匀。5、将细胞放入培养箱孵育4～6h后，可以更换含血清培养液去除复合物也可不用。6、24～48h后可以观察转入基因表达情况。
f7、稳定转染：换含血清培养基24h后将细胞以1：10或更高比例传代，1天后更换筛选培养基筛选。
8、优化：要保证细胞汇合率达90～95比较高DNALipofectami
e2000比率1：05～1：5，一般细胞1：2～3
脂质体转染法的主要优点是可用将DNA转染至悬浮或者铁壁细胞培养、转染效率相对较高、对基因片段大小的限制较小等，但是
阳离子脂质体对细胞的毒性相对较高，为了防止其毒性，要摸索好如下实验条件：脂质体与质粒的比例r