光通道（FL1FL4）一般用对数（Log）。
（6）调出细胞计数器：Acquire
Cou
ter
4上阴性对照将阴性对照管混匀，上机，功能键设置在“RUN”散点图出现细胞信号，第一个图：让细胞信号出现在自己看上去舒服的区域；其他三个散点图，要将细胞信号调整到阴性区域，即左下角区域。通过移动通
f道电压来实现。
获取实验数据：暂停刚才实验Pause
Abort
Acquire注意：在获取细胞之前，要将Setup前面的勾子取消。
5上单阳管，调节功能键“RUN”如果细胞信号出现在双阳区域，说明
有细胞信号露到相邻通道中，要将细胞信号调节到单一通道中。通过
移动通道补偿来实现，想要细胞信号向哪个通道移动，就用散点图中
的另一个通道去减，即想要移动的那个通道作为减数。如在FL1和
FL2两个通道组成的散点图中，细胞信号出现在双阳区域，要将细胞
信号移动到FL1通道，就要调节FL2FL1对应的补偿，直到细胞信号
只出现在FL1通道中，这样可以消除漏到FL2通道中的信号。
备注：FL1FITC，FL2PE，FL3PerCP，FL4APC。
根据实验要求选择流速，按设置顺序上样。
6点击“Acquire”命令，仪器开始获取数据，并自动将数据文件保存
到规定的目录下。
7样本获取完毕，功能键设置在“STANDBY”，并选择“脱机”命令。
8点击“Quit”命令，退出CellQuest软件。
9关机：（1）1次氯酸，高速（Hi）“RUN”510mi
，Acquire如果
细胞计算器中不显示有细胞则表示管道已经干净。
（2）用双蒸水高速（Hi）“RUN”510mi
，Sta
dby5mi
，关
机。
四、DNA倍性分析实验：一、仪器情况检测，DNA倍性分析的质控用CellQuestPro软件进行。
1（1）保证机器预热5mi
，打开CellQuestPro软件，选择“联机”。
Acquire
Co
ecttoCytometer
做质控时，需要画三个图，第一个是散点图，横坐标是FSC，纵坐标是SSC；第二
个是散点图，横坐标是FL2Width，纵坐标是FL2Area；第三个是直方图，横坐标是FL2Area，
纵坐标是Cou
ter。做DNA倍性实验时一般使用PI染色，所以选择用第二通道（FL2）。DNA
倍性分析不需要调节补偿。因为属于单色实验，所以把电压界面Fourcolor掉。将信号接收方式“Log”改为“Li
”，DDMPram改为“FL2”。
前的勾去阈值使用
FL2，而不是FSC。
去掉细胞群中粘连体，上样本，利用第二个图，调节FL2A和FL2W电压，使细
f胞群信号显示在横纵坐标200位置，通常血细胞中单细胞成45℃，粘连体体积会比单细胞大，大概在横坐标400位置。保存质控。
二、DNA倍性分析用ModFitLT软件进行。（1）打开ModFitLT软件，调出样品检测结果，（2）选择面积r